{"id":5927,"date":"2016-01-05T16:01:48","date_gmt":"2016-01-05T19:01:48","guid":{"rendered":"https:\/\/www.infobioquimica.com\/new\/?p=5927"},"modified":"2016-02-03T16:10:20","modified_gmt":"2016-02-03T19:10:20","slug":"algoritmo-para-deteccion-de-virus-zika-zikv","status":"publish","type":"post","link":"https:\/\/infobioquimica.com\/new\/2016\/01\/05\/algoritmo-para-deteccion-de-virus-zika-zikv\/","title":{"rendered":"Algoritmo para detecci\u00f3n de virus Zika (ZIKV)"},"content":{"rendered":"<h4>Sospecha de introducci\u00f3n del virus en un \u00e1rea espec\u00edfica<\/h4>\n<p>Este algoritmo est\u00e1 dirigido a aquellos laboratorios de referencia que cuentan con capacidad instalada para la detecci\u00f3n (molecular\/antig\u00e9nica y serol\u00f3gica) de dengue 2 (DENV), chikungunya (CHIKV) y Zika 3 (ZIKV). Para la manipulaci\u00f3n de muestras sospechosas, se requiere un nivel de contenci\u00f3n BSL2.<\/p>\n<h4>Figura 1. Algoritmo para detecci\u00f3n de ZIKV<\/h4>\n<p><a href=\"https:\/\/www.infobioquimica.com\/new\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/algorZIKA.jpg\" rel=\"attachment wp-att-5930\"><img loading=\"lazy\" decoding=\"async\" class=\"alignnone size-full wp-image-5930\" src=\"https:\/\/www.infobioquimica.com\/new\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/algorZIKA.jpg\" alt=\"algoritmo ZIKA\" width=\"600\" height=\"453\" srcset=\"https:\/\/infobioquimica.com\/new\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/algorZIKA.jpg 600w, https:\/\/infobioquimica.com\/new\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/algorZIKA-300x227.jpg 300w, https:\/\/infobioquimica.com\/new\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/algorZIKA-80x60.jpg 80w, https:\/\/infobioquimica.com\/new\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/algorZIKA-556x420.jpg 556w\" sizes=\"auto, (max-width: 600px) 100vw, 600px\" \/><\/a><\/p>\n<ol>\n<li>Seg\u00fan el perfil epidemiol\u00f3gico del pa\u00eds y teniendo en cuenta las caracter\u00edsticas cl\u00ednicas de la infecci\u00f3n, se debe considerar la inclusi\u00f3n de otros Arbovirus como parte del algoritmo diferencial para virus Zika.<\/li>\n<li>Este algoritmo no es exhaustivo, y la infecci\u00f3n por dengue debe ser descartada seg\u00fan las gu\u00edas de manejo cl\u00ednico y algoritmo de laboratorio\u00a0espec\u00edfico.<\/li>\n<li>\u00c9stas recomendaciones son provisionales y est\u00e1n sujetas a modificaciones posteriores en funci\u00f3n de los avances en el conocimiento sobre\u00a0la enfermedad y el agente etiol\u00f3gico.<\/li>\n<\/ol>\n<h4>Recolecci\u00f3n y env\u00edo de muestras<\/h4>\n<h4>Diagn\u00f3stico virol\u00f3gico<\/h4>\n<p><strong>Tipo de muestra:<\/strong> suero (colectado en tubo seco)<\/p>\n<p>Dado que la enfermedad por virus Zika suele ser leve, los s\u00edntomas iniciales pueden pasar desapercibidos lo cual disminuye la oportunidad para la toma de la muestra. Aunque el periodo de viremia a\u00fan no ha sido plenamente establecido, el RNA viral ha sido detectado en suero hasta 10 d\u00edas despu\u00e9s de iniciados los s\u00edntomas. Asimismo, el RNA de ZIKV ha sido detectado en orina durante un periodo de tiempo prolongado de la fase aguda, por lo que podr\u00eda considerarse como una muestra alternativa. Sin embargo y ya que se requieren mayores estudios al respecto, se recomienda tomar una muestra de suero dentro de los primeros 5 d\u00edas de iniciados los s\u00edntomas.<\/p>\n<h4>Diagn\u00f3stico Serol\u00f3gico<\/h4>\n<p><strong>Tipo de muestra<\/strong>: suero (colectado en tubo seco)<\/p>\n<p>La detecci\u00f3n de anticuerpos IgM espec\u00edficos para ZIKAV es posible por ensayos de ELISA o inmunofluorescencia a partir del d\u00eda 5 de iniciados los s\u00edntomas. Ya que un suero \u00fanico en fase aguda es presuntivo, se recomienda la toma de una segunda muestra entre una y dos semanas despu\u00e9s de la primera muestra para demostrar seroconversi\u00f3n (negativo a positivo) \u00f3 incremento hasta cuatro veces el t\u00edtulo de anticuerpos (con un ensayo cuantitativo).<\/p>\n<p>La interpretaci\u00f3n de los ensayos serol\u00f3gicos tiene una relevancia especial para el diagn\u00f3stico de ZIKAV. En infecciones primarias (primera infecci\u00f3n con un flavivirus) se ha demostrado que las reacciones cruzadas con otros virus gen\u00e9ticamente relacionados son m\u00ednimas. Sin embargo, se ha demostrado que sueros de individuos con historia previa de infecci\u00f3n por otros flavivirus (especialmente dengue, fiebre amarilla y West Nile) pueden cruzar en estos ensayos. Si bien la t\u00e9cnica de neutralizaci\u00f3n por reducci\u00f3n de placas (PRNT), ofrece una mayor especificidad para detecci\u00f3n de anticuerpos neutralizantes (IgG), la reacci\u00f3n cruzada tambi\u00e9n ha sido documentada; de hecho,han encontrado pacientes con historia previa de\u00a0infecci\u00f3n por otros flavivirus que ante infecci\u00f3n por ZIKAV elevan hasta cuatro veces los t\u00edtulos de anticuerpos neutralizantes.<\/p>\n<h4>Conservaci\u00f3n de la muestra<\/h4>\n<ul>\n<li>Refrigerada (2\u20138 \u00b0C) si ser\u00e1 procesada (o enviada al laboratorio de referencia) antes de 48 horas.<\/li>\n<li>Congelada (-10 a -20 \u00b0C) si ser\u00e1 procesada despu\u00e9s de 48 horas o durante un periodo no mayor de 7 d\u00edas.<\/li>\n<li>Congelada (-70 \u00b0C) si ser\u00e1 procesada despu\u00e9s de una semana. La muestra se conserva adecuadamente durante periodos prolongados de tiempo.<\/li>\n<\/ul>\n<h4>Env\u00edo de la muestra por v\u00eda a\u00e9rea al laboratorio de referencia<\/h4>\n<ul>\n<li>Enviar (en lo posible) con hielo seco; como m\u00ednimo, garantizar la cadena de fr\u00edo con geles refrigerantes. Utilizar siempre triple empaque.<\/li>\n<li>Enviar durante las primeras 48 horas.<\/li>\n<li>Las muestras originales deben ser empacadas, marcadas etiquetadas (si se utiliza hielo seco) y documentadas como categor\u00eda B.<\/li>\n<li>Enviar siempre la ficha cl\u00ednica y epidemiol\u00f3gica completamente diligenciada.<\/li>\n<\/ul>\n<h4>Comentarios y recomendaciones adicionales<\/h4>\n<ul>\n<li>Existen diferentes protocolos (iniciadores y sondas) para la detecci\u00f3n de ZIKAV por RT-PCR (tanto convencional como tiempo real). Teniendo en cuenta la sensibilidad, se recomiendan los protocolos utilizados por el centro para el Control y Prevenci\u00f3n de Enfermedades de los Estados Unidos (CDC). Estos protocolos deben ser estandarizados para su uso diagn\u00f3stico a nivel local. Recomendaciones adicionales ser\u00e1n entregadas una vez se caractericen los primeros casos.<\/li>\n<li>La determinaci\u00f3n de IgM puede hacerse por diferentes t\u00e9cnicas (ELISA o IF). Sin embargo, hasta el momento no se cuenta con estuches comerciales (avalados o validados) para determinaci\u00f3n serol\u00f3gica de ZIKAV. En cualquier caso, la mejor sensibilidad est\u00e1 dada en aquellas plataformas in house que utilizan como ant\u00edgeno el virus completo en comparaci\u00f3n con aquellas que utilizan prote\u00ednas (o p\u00e9ptidos) recombinantes.<\/li>\n<li>El aislamiento viral no se considera como una t\u00e9cnica diagn\u00f3stico, y se recomienda \u00fanicamente para ensayos de investigaci\u00f3n complementarios a la vigilancia en salud p\u00fabica.<\/li>\n<li>Los laboratorios que no cuentan con la capacidad para confirmaci\u00f3n virol\u00f3gica (RT-PCR, aislamiento viral, secuenciaci\u00f3n) o serol\u00f3gica (PRNT), deber\u00e1n enviar las muestras a un laboratorio de referencia o centro colaborador de la Organizaci\u00f3n Mundial de la Salud (OMS). Antes de realizar cualquier env\u00edo, por favor comunicarse con las personas de contacto en cada centro y con la oficina de la Organizaci\u00f3n Panamericana de la Salud (OPS) en Washington, DC.<\/li>\n<\/ul>\n<h4>Referencias Bibliogr\u00e1ficas<\/h4>\n<ol>\n<li>Gourinat AC, O\u2019Connor O, Calvez E, Goarant C, Dupont- Rouzeyrol M: Detection of Zika Virus in Urine. Emerging Infectious Diseases 2015, 21:84-6. http:\/\/wwwnc.cdc.gov\/eid\/article\/21\/1\/14-0894_article<\/li>\n<li>Hayes EB: Zika virus outside Africa. Emerging Infectious Diseases 2009, 15:1347-50.<\/li>\n<li>European Center for Disease Prevention and Control . Rapid Risk Assessment. Zika virus infection outbreak, French Polynesia. 2014.<\/li>\n<li>Lanciotti RS, Kosoy OL, Laven JJ, Velez JO, Lambert AJ, Johnson AJ, et. al.: Genetic and Serologic Properties of Zika Virus Associated with an http:\/\/ecdc.europa.eu\/en\/publications\/Publications\/ Zika-virus-French-Polynesia-rapid-risk-assessment.pdf Epidemic, Yap State, Micronesia, 2007. Emerging Infectious Diseases 2008, 14:1232-6. http:\/\/wwwnc.cdc.gov\/eid\/article\/14\/8\/08-0287_article<\/li>\n<li>OMS. Gu\u00eda sobre la reglamentaci\u00f3n relativa al Transporte de sustancias infecciosas, 2013\u20132014 http:\/\/apps.who.int\/iris\/bitstream\/ 10665\/85394\/1\/WHO_HSE_GCR_2012.12_spa.pdf<\/li>\n<\/ol>\n<p><strong>Fuente:<\/strong> <a href=\"http:\/\/revistabioreview.com\/revista-nota.php?nota=1037&amp;revista=57\" target=\"_blank\">Bioreview<\/a><\/p>\n","protected":false},"excerpt":{"rendered":"<p>Sospecha de introducci\u00f3n del virus en un \u00e1rea espec\u00edfica Este algoritmo est\u00e1 dirigido a aquellos laboratorios de referencia que cuentan con capacidad instalada para la detecci\u00f3n (molecular\/antig\u00e9nica y serol\u00f3gica) de dengue 2 (DENV), chikungunya (CHIKV) y Zika 3 (ZIKV). Para la manipulaci\u00f3n de muestras sospechosas, se requiere un nivel de contenci\u00f3n BSL2. Figura 1. 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