{"id":5502,"date":"2016-01-08T08:27:03","date_gmt":"2016-01-08T11:27:03","guid":{"rendered":"https:\/\/www.infobioquimica.com\/new\/?p=5502"},"modified":"2016-01-08T08:27:03","modified_gmt":"2016-01-08T11:27:03","slug":"etapa-critica-de-la-hemostasia-procedimientos-preanaliticos","status":"publish","type":"post","link":"https:\/\/infobioquimica.com\/new\/2016\/01\/08\/etapa-critica-de-la-hemostasia-procedimientos-preanaliticos\/","title":{"rendered":"Etapa Cr\u00edtica de la Hemostasia: Procedimientos Preanal\u00edticos"},"content":{"rendered":"<p>El sistema hemost\u00e1tico presenta una gran variaci\u00f3n desde la venopunci\u00f3n hasta el an\u00e1lisis, dichos cambios generan la necesidad de estandarizar todo el procedimiento preanal\u00edtico.<\/p>\n<h4>Requerimientos para el paciente<\/h4>\n<p>Es aconsejable que concurra al servicio:<\/p>\n<ul>\n<li>En ayunas de l\u00e1cteos y grasas, ya que los plasmas y sueros lip\u00e9micos son una de las interferencias reconocidas en los coagul\u00f3metros que utilizan sistemas \u00f3pticos de detecci\u00f3n y por ende los resultados no son confiables.<\/li>\n<li>Luego que el paciente haya descansado al menos 30 min para evitar las variaciones por el hematocrito y el efecto de la activaci\u00f3n del endotelio.<\/li>\n<li>Las muestras para el estudio del sistema fibrinol\u00edtico deben tomarse entre las 8 y las 10 a.m. Debido al ritmo circadiano que muestran el t-PA y el PAI.<\/li>\n<\/ul>\n<h4>Identificaci\u00f3n del paciente<\/h4>\n<ul>\n<li>Es importante poseer un formato de petici\u00f3n espec\u00edfico y asegurarse de un correcto ingreso del pedido en caso de disponer de c\u00f3digos de barras.<\/li>\n<\/ul>\n<h4>Toma de la muestra<\/h4>\n<ul>\n<li>Muestra ideal: sangre venosa. Ciertamente ser\u00eda un error hacer un diagn\u00f3stico firme de un trastorno hemorr\u00e1gico cong\u00e9nito, tal como la hemofilia, a menos que se pueda obtener una muestra satisfactoria de sangre venosa.<\/li>\n<li>En ni\u00f1os y reci\u00e9n nacidos: por lo general solo puede obtenerse sangre capilar, de \u00e9sta puede realizarse: recuento de plaquetas, microhematocrito, extensiones de sangre y, con el plasma citratado, TP, factores VIII y IX, y estimaci\u00f3n semicuantitava de Fibrin\u00f3geno. La sangre obtenida de una punci\u00f3n de tal\u00f3n o dedo debe manar libremente y en abundancia.<\/li>\n<li>En lo posible no deben utilizarse muestras extra\u00eddas de cat\u00e9ter por la probabilidad de contaminaci\u00f3n con heparina.<\/li>\n<li>La utilizaci\u00f3n de la c\u00e1nula butterfly no es aconsejable, en caso de no tener otra opci\u00f3n utilizar una de calibre grande. Un calibre mayor evita la posible activaci\u00f3n del sistema por contacto.<\/li>\n<li>La punci\u00f3n debe ser \u201climpia\u201d y la aguja no debe moverse excesivamente para no remover tejidos subendoteliales que actuar\u00edan como una tromboplastina. A su vez, una punci\u00f3n dif\u00edcil eleva la posibilidad de obtener muestras hemolizadas que interfieren con los sistemas \u00f3pticos de detecci\u00f3n.<\/li>\n<\/ul>\n<h4>Procesamiento de la muestra<\/h4>\n<ul>\n<li>Los tubos destinados a las pruebas de coagulaci\u00f3n deben llenarse antes que los destinados a otras pruebas. De esta manera se evita que se coagule la muestra antes de poder cargar el tubo para coagulaci\u00f3n y, por otro lado, tambi\u00e9n se evita el contacto de la jeringa con los anticoagulantes de los otros tubos a cargar.<\/li>\n<li>El anticoagulante es el citrato de sodio. El National Comittee For Clinical Laboratory Standards (NCCLS) y el comit\u00e9 de expertos de la ISTH recomiendan la utilizaci\u00f3n de citrato tris\u00f3dico dihidratado a una concentraci\u00f3n de 0,105 o 0,109 mol\/l . El European Comittee for Clinical Laboratory Standards (ECCLS) recomienda la utilizaci\u00f3n a una concentraci\u00f3n entre 0,100 a 0,120 mol \/l.<\/li>\n<li>Para evitar activaci\u00f3n del sistema, al colocar la sangre se debe dejar resbalar por las paredes del tubo, evitando hacer espuma y debe invertirse al menos 5 veces tratando de no hacer burbujas.<\/li>\n<li><strong>La proporci\u00f3n sangre:anticoagulante debe ser 9:1<\/strong> (4,5ml sangre + 0,5ml citrato). En caso de extracciones escasas disponer de tubos preparados con la mitad de anticoagulante, esto permitir\u00e1 poder realizar la determinaci\u00f3n a pesar de la poca cantidad de muestra.\u00a0Rechazar aquellos tubos que contengan menos de 90 % de la sangre requerida (se pueden producir alargamientos de los tiempos) y est\u00e9n llenados por exceso (proporci\u00f3n &gt; 12:1), se podr\u00eda producir activaci\u00f3n del sistema.<\/li>\n<\/ul>\n<h4>Hematocrito del paciente<\/h4>\n<ul>\n<li>La proporci\u00f3n sangre:anticoagulante es diferente en enfermos hemoconcentrados (los reci\u00e9n nacidos y pacientes con efisema pulmonar), como tambi\u00e9n los es en los hemodilu\u00eddos (embarazadas). Por lo tanto, para hematocritos que var\u00edan entre 25 a 55 % no hay que modificar la proporci\u00f3n de citrato de sodio. Si el hematocrito es mayor que 55% o menor que 25 % se debe corregir la proporci\u00f3n sangre: anticoagulante, de acuerdo a la\u00a0siguiente tabla.<\/li>\n<\/ul>\n<p style=\"text-align: center;\"><strong>Tabla 1.<\/strong><\/p>\n<table border=\"1\" align=\"center\">\n<tbody>\n<tr>\n<td style=\"text-align: center;\" colspan=\"3\"><strong>Volumen de Citrato de Sodio de acuerdo al Hematocrito<\/strong><\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td style=\"text-align: center;\"><strong>Hematocrito (%)<\/strong><\/td>\n<td style=\"text-align: center;\"><strong>Sangre (ml)<\/strong><\/td>\n<td style=\"text-align: center;\"><strong>Citrato de Sodio (ml)<\/strong><\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td style=\"text-align: center;\">10<\/td>\n<td style=\"text-align: center;\">5<\/td>\n<td style=\"text-align: center;\">0,75<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td style=\"text-align: center;\">20<\/td>\n<td style=\"text-align: center;\">5<\/td>\n<td style=\"text-align: center;\">0,70<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td style=\"text-align: center;\">25 &#8211; 55<\/td>\n<td style=\"text-align: center;\">5<\/td>\n<td style=\"text-align: center;\">0,50<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td style=\"text-align: center;\">56<\/td>\n<td style=\"text-align: center;\">5<\/td>\n<td style=\"text-align: center;\">0,40<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td style=\"text-align: center;\">65<\/td>\n<td style=\"text-align: center;\">5<\/td>\n<td style=\"text-align: center;\">0,35<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td style=\"text-align: center;\">75<\/td>\n<td style=\"text-align: center;\">5<\/td>\n<td style=\"text-align: center;\">0,25<\/td>\n<\/tr>\n<\/tbody>\n<\/table>\n<h4>Centrifugaci\u00f3n y almacenamiento<\/h4>\n<ul>\n<li>Para pruebas cuyos reactivos contienen un exceso de fosfol\u00edpidos como el TP o el KPTT: centrifugar a 1.000 g durante 10 minutos.<\/li>\n<li>Para la determinaci\u00f3n del factor VIII : centrifugar a 2.500 g durante 15 minutos.<\/li>\n<li>Los tubos destinados a la investigaci\u00f3n del anticoagulante l\u00fapico y la mezcla de plasmas normales destinada a esta misma\u00a0prueba: doble centrifugaci\u00f3n a 3.000 g durante 30 minutos.<\/li>\n<li>Si las muestras van a ser congeladas es recomendable una doble centrifugaci\u00f3n.<\/li>\n<li>Estabilidad entre la obtenci\u00f3n de las muestras y la realizaci\u00f3n de las pruebas:\n<ul>\n<li>2 horas a 22 &#8211; 24 \u00b0C (TA)<\/li>\n<li>4 horas a 4 \u00b0C<\/li>\n<li>2 semanas a -20 \u00b0C<\/li>\n<li>6 meses a &#8211; 70 \u00b0C<\/li>\n<\/ul>\n<\/li>\n<li>Las muestras deben descongelarse a 37\u00b0C y las determinaciones deben realizarse antes de las 2hs. No deben utilizarse muestras congeladas y descongeladas m\u00e1s de una vez.<\/li>\n<li>Actualmente se considera preferible la conservaci\u00f3n a TA, especialmente para determinaciones de TP y del factor VII, con lo cual se evita la progresiva activaci\u00f3n del factor VII.<\/li>\n<li>El tiempo de conservaci\u00f3n, no debe ser superior a 2 horas para la determinaci\u00f3n del factor VIII, pero se puede prolongar a 6 horas para el TP y el KPTT, siempre que el tubo se conserve tapado hasta su valoraci\u00f3n anal\u00edtica (incluido el tiempo de la centrifugaci\u00f3n), para evitar la p\u00e9rdida de CO2 y la elevaci\u00f3n del pH.<\/li>\n<\/ul>\n<p><strong>Autor:\u00a0Bioq. Ma. Gabriela Alegre \/\u00a0Marketing \u2013 Wiener lab &#8211;\u00a0malegre@wiener-lab.com.ar<\/strong><\/p>\n<p><strong>Fuente:<\/strong> <a href=\"http:\/\/www.notiwiener.net\/2015\/08\/etapa-critica-de-la-hemostasia-procedimientos-preanaliticos\/\" target=\"_blank\">NotiWiener<\/a><\/p>\n","protected":false},"excerpt":{"rendered":"<p>El sistema hemost\u00e1tico presenta una gran variaci\u00f3n desde la venopunci\u00f3n hasta el an\u00e1lisis, dichos cambios generan la necesidad de estandarizar todo el procedimiento preanal\u00edtico. 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